Parecoxib Sodium CaCCinh-A01 Camphor
glycolate (hydroxyacetate) Doxorubicin (Adriamycin) HCl
Di-4-ANEPPDHQ 膜电位荧光探针(近红外) 是一种能够快速反应膜电位变化的染料。本身不具备荧光活性,只有和细胞膜结合后才会发出荧光。它可以足够快地检测瞬态(毫秒)可兴奋细胞的膜电位变化。在各种组织、细胞、以及细胞膜模型中,Di-4-ANEPPDHQ 膜电位荧光探针(近红外) 的荧光变化幅度较为均一,每 100 mV 的变化通常显示 10% 的荧光改变。
1:一般建议:溶解度为Medlife测试数据,可能与文献描述存在差异。这是由于生产工艺和批次不同产生的正常现象。为了使其更好的溶解,请用37℃加热试管并在超声波水浴中震动片刻。不同批次产品溶解度各有差异,仅做参考,具体以实验方案为准。
2:储存条件:粉末-20°C一般情况可以保存3年,溶于溶剂-80°C一般情况可以保存1年。不同产品及不同批次产品可能存在差异,请细致阅读产品信息,并辅助参考相关文献描述。
Di-4-ANEPPDHQ 膜电位荧光探针(近红外)是一种快速响应的膜电位染料,本身无荧光,与细胞膜结合后发出荧光。其荧光变化可检测毫秒级瞬态膜电位变化,适用于可兴奋细胞。在多种组织、细胞及细胞膜模型中,荧光变化幅度均一,每100 mV膜电位变化通常引起约10%的荧光改变。该产品货号为PR01128,CAS号797785-10-5。
Di-4-ANEPPDHQ 与膜结合后的激发波长约 480 nm,发射波长约 700 nm,属于近红外范围。近红外发射可减少组织自发荧光干扰,提高信噪比,适合厚组织或活体成像。具体光谱参数可能因仪器和溶剂环境略有差异,建议以产品说明书或 COA 为准。
推荐使用无水 DMSO 配制储备液,因为该探针难溶于水,易溶于 DMSO、DMF 等有机溶剂。常见储备液浓度为 1–5 mM,具体可根据实验需求调整。配制后应分装避光保存,避免反复冻融。工作液需用缓冲液稀释至 1–10 μM,现配现用。详细配制建议请参考产品说明书。
粉末应于 -20°C 避光干燥保存,有效期通常为 2 年。储备液用无水 DMSO 配制后,分装于避光管中 -20°C 保存,避免反复冻融,建议 3 个月内使用。具体稳定期受储存条件影响,请以产品 COA 或说明书为准,并联系技术支持获取更详细信息。
每批产品均提供 COA,其中包含纯度、外观、光谱特性等质检数据。您可核对 COA 中的 HPLC 纯度、质谱或核磁确认结构。若需特定批次的质量信息,请联系技术支持并提供货号和批号。使用前建议观察外观是否为红色至深红色固体,并避光操作。
工作浓度通常为 1–10 μM,孵育时间 5–15 分钟(37°C 避光)。具体浓度和时间需根据细胞类型优化,避免过度染色导致毒性。建议设置未染色对照,并避免血清干扰。详细方案请参考产品说明书或联系技术支持获取针对您实验体系的建议。
可以,该探针响应快速,适用于检测可兴奋细胞的毫秒级瞬态膜电位变化。每 100 mV 膜电位变化通常引起约 10% 的荧光改变。校准可使用缬氨霉素在不同 K+ 浓度下建立荧光-电压曲线,具体步骤请参考产品说明书或联系技术支持。
该产品室温避光运输,收到后应立即按 -20°C 避光干燥条件储存。开盖前平衡至室温,防止吸潮。操作时请佩戴防护手套和眼镜,避免直接接触。具体安全信息请查阅 MSDS 或联系技术支持。
可以,其近红外发射适合组织成像,但需注意组织自发荧光干扰,建议设置未染色对照。染色浓度和时间需根据组织类型优化,避免毒性。具体实验方案请参考产品说明书或联系技术支持获取建议。
膜电位是细胞兴奋性与膜结构动力学的核心参数。近红外电压敏感染料Di-4-ANEPPDHQ凭借毫秒级响应、膜结合依赖性荧光及较均一的电位敏感性,成为连接电生理与膜生物物理的重要工具。本文综述其光物理机制、在可兴奋细胞中的快速电位成像进展,并重点讨论其在膜偶极电位、膜有序度与膜脂环境研究中的拓展应用,结合近期文献揭示该探针从“电位报告器”向“膜环境多参数探针”演进的趋势,同时指出定量校准与探针特异性方面的现存局限。
Di-4-ANEPPDHQ是一种对膜电位快速响应的近红外荧光探针,其荧光变化幅度在多种细胞与膜模型中较为均一,且发射光谱对膜有序状态敏感。本文从实验设计角度出发,系统梳理该探针在可兴奋细胞膜电位记录、膜微区有序性检测以及膜-骨架相互作用研究中的应用场景,结合近期关于膜偶极电位、多酚诱导膜重组、淀粉样蛋白膜损伤、镉暴露线粒体膜僵化、胆固醇调控溶酶体膜通透性以及草履虫皮层膜转变等研究,讨论探针选择、光谱设置、对照设计与数据解释中的关键问题,并指出当前证据的局限性与未来方法学发展方向。
本文聚焦Di-4-ANEPPDHQ在膜电位与膜有序性检测中的实验方法学,系统梳理探针标记、成像参数设置、光谱解混、校准与对照设计等关键环节,并结合近期文献讨论其在细胞膜生物物理研究中的技术局限与优化策略,为研究者提供可操作的技术参考。
Di-4-ANEPPDHQ作为一种近红外膜电位荧光探针,其荧光信号同时受膜电位与膜脂有序性(膜偶极电位、膜流动性等)调制,这一“双敏感性”既是该探针在多参数膜生物物理研究中的独特优势,也是数据解读中信号归属模糊的主要来源。本文从探针的电子结构出发,分析其膜电位响应与膜环境响应的物理化学基础,梳理在光谱维度(激发/发射位移)与时间维度(响应速率)上区分两类信号的可行策略,并结合近期关于膜偶极电位、膜有序性转变与膜刚性化的研究案例,提出以“对照实验矩阵+光谱解混+动力学分解”为核心的研究设计框架。文章强调,在不具备独立参照条件时,应将Di-4-ANEPPDHQ信号审慎表述为“膜电位与膜环境变化的综合响应”,而非单一膜电位读数。